生物学原理 皱纹盘鲍的卵子在第一次成熟分裂中期受精，受精后放出第一和第二极体，完成成熟分裂。如果通过人为的诱导处理，阻止其放出第一(或第二)极体，使本来要成为第一(或第二)极体的单倍染色体组保留下来，引起染色体的加倍，就能形成第一极体阻止型三倍体(3N-1Pb)或第二极体阻止型三倍体(3N—2pb)，其原理如图1.16所示。皱纹盘鲍的受精卵在水温21℃条件下，受精后12～13分钟放出第一极体，32～33分钟放出第二极体。因此，只要在受精卵放出极体前进行诱导处理，就能形成三倍体。具体地说，受精后10分钟开始处理，可以形成第一极体阻止型三倍体;受精后30分钟开始处理，可以形成第二极体阻止型三倍体。
鲍的三倍体形成原理示意图A、正常二倍体的形成 B、3N-1Pb的形成 C、3N-2Pb的形成
(箭头表示诱导处理)
诱导方法 人工诱导鲍三倍体的方法可分为物理法与化学法两大类，前者有温度休克、压力处理等，后者采用细胞松弛素B(简称CB)等药物处理。低温休克法与CB处理法都是诱导鲍三倍体的有效方法。①低温休克法。将鲍的精子与卵在常温海水中受精后，按照设定的处理开始时间(即受精后10分钟或30分钟)，将受精卵用250目筛绢制成的网箱承接，放入预先调配好的低温海水(水温3.0±0.5℃)中浸渍处理，处理持续时间为10分钟，达到持续时间后，立即将受精卵收容，直接移到常温海水中孵化培育。②CB诱导法。由于CB难溶于水，先把CB用少量二甲亚砜(简称DMSO)溶解，再加到海水中，CB浓度以每升1.0～1.5毫克为宜，并调整海水中DMSO的最终浓度为每升100微升。受精后10分钟或30分钟，将受精卵浸渍在上述CB海水溶液中，持续处理15分钟。处理之后为除去残留在卵子表面的CB，再用每升100微升的DMSO海水溶液浸洗卵子30分钟，然后将受精卵置于正常海水中孵化。
三倍体鲍的倍数性判别方法 采用染色体计数法。早期可用刚孵化的担轮幼虫，3厘米以上的鲍可用鳃组织作材料，制作染色体玻片标本。根据皱纹盘鲍二倍体的染色体数为2n=36，三倍体为3n=54，进行染色体观察计数，从而确定其倍数性。制作染色体玻片标本时，先将担轮幼虫或鳃组织经0.1%秋水仙素处理，再用0.075M的KCl溶液低渗作用30～60分钟，卡诺氏液(纯酒精：醋酸=3∶1)充分固定后得到的细胞悬浊液滴片，最后经20%的吉母萨液染色即可。观察时应选择20～30个染色体分散良好、清晰的分裂相进行计数，可在高倍显微镜下直接进行，也可利用带有投影绘图装置的显微镜、描图后计数，或利用显微摄影装置拍照后计数。
三倍体的诱导率 指三倍体分裂相的细胞数占分裂相细胞总数的百分率。由于卵子的成熟度、处理时的条件等因素，目前各种诱导鲍三倍体的方法还难以达到100%的诱导率。一般处理强度(水温、药物浓度等)加大、持续时间延长，三倍体诱导率提高，但胚胎的正常发育率和成活率则降低。用低温休克法诱导时，鲍的三倍体诱导率可达50～60%;用CB诱导，鲍三倍体诱导率可达60～80%。
三倍体鲍苗的培育 用预先附有底栖硅藻的透明波纹板作为采苗器，采苗密度每平方厘米0.1个幼体，稚鲍培育阶段每天换水1～2次，每次1/2，壳长3毫米以上时用1%酒精麻醉剥离。幼鲍采用网箱流水饲育法，投喂鲜嫩海藻或人工配合饵料，日流水量为饲育水体的10倍。
三倍体鲍的生长 对皱纹盘鲍三倍体的生长情况进行研究的结果表明，三倍体与二倍体的当年稚鲍及2龄前期，在壳长和体重的增长上无明显差异，但从2龄后期开始，三倍体的壳长、体重增长逐渐优于二倍体。在室内饲育19个月的鲍，三倍体平均壳长达40毫米，平均个体重达8.9克，分别比同期的二倍体壳长大10.2%，体重大20.1%。