Section 2 Brood fish,Fertilized Eggs and Early Development for Japanese sea bass亲鱼 性成熟的亲鱼(brood fish)是人工育苗(artificial seeding rearing) 的首要条件，当前解决亲鱼主要有三个途径。产卵场(spawning ground)采捕天然性成熟亲鱼，即随船出海，采集性成熟已达Ⅴ期的亲鱼，在现场进行人工授精 (artificial fertilization)，然后经洗卵、装袋充氧，运回育苗场 (nursery ground)。此法简单易行，但在产卵场规模较小，性成熟亲鱼较少的海区，要求同时都能捕到性成熟达V期的雌雄亲鱼，有相当难度。补救办法是带冰瓶出海采集成熟精液，待取得成熟雌鱼时，再挤卵进行人工授精。采捕天然亲鱼，经过强化培育或注射性激素促熟等措施，以取得性成熟精卵。此法是对在非产卵期捕获已达性成熟年龄的活鱼，经驯养而成。但要实现自然产卵有时仍有一定难度，往往需采取注射性激素等办法促熟。人工培育亲鱼，即采用人工繁殖苗种或自然捕捞苗种，经2～3年以上养成 (growout) 的人工亲鱼。因已适应人工饲育环境，可实现自然产卵 (spontaneous spawn)，这是人工育苗解决亲鱼来源的主要途径。关于花鲈亲鱼的培育有多种方式，日本自70年代初就成功地促使海水网箱培育的亲鱼自然产卵。以后又在陆上水泥池中直接养成，通过人工授精，也获得了满意的结果。利用淡水鱼池养殖的亲鱼，其性腺也能正常发育，通过催产，人工授精，也能取得较好的结果。
人工催产与人工授精 当海上捕获未成熟或人工驯养的未成熟亲鱼，挑选身体健康，腹部较肥满的亲鱼，分别用人体绒毛膜促性腺激素 (human chorionic gonadotropin，HCG)，按体重以200IU/kg (兽用) 剂量，隔日3次腹腔注射 (intraperitoncal injection)，处理后2～4d即可进行人工采卵 (artificial egg collection)。具体时间依亲鱼性腺成熟状况而异，略有早晚。据伏见徹(1976) 报道，注射30尾，采卵11尾，每尾采卵量波动范围为5万～33万粒 (体长37.7～58.5cm，体重900～3 100g)，约占怀卵量(brood amount)的1/3～2/3，但孵化率 (hatching rate) 差异较大，高的可达70%左右。此外在注射人体绒毛膜促性腺激素 (HCG)的同时再配用促黄体释放激素类似物 (luterinizing release hormoneanalogue，LRHA)，效果将更好。性腺发育至V期的成熟亲鱼即可进行人工授精。操作时先将亲鱼提起，腹部向下，缓缓推挤腹部，将成熟卵挤入光滑容器内，然后尽快加入精液，搅拌均匀，静置5min左右，加海水冲洗至水清为止。
受精卵运输 一般采用塑料袋运输，将塑料袋装入1/2的过滤海水，按每升水2万粒左右的密度，充入氧气，扎紧袋口。运输途中要严格控制温度温差，一般不应超过1～2℃;为了防止充氧袋内水温上升，可采 取以下几个措施：使用保温车;将充氧袋放入较大装水的帆布桶内;可在袋子周围放些冰块或其他降温材料。
早期发育 花鲈的卵子为分离的球形浮性卵 (pelagic egg)，卵膜 (egg membrane) 较薄，光滑透明，具韧性。受精卵卵径 (egg diameter) 较大，1.22～1.45mm，油球1个，呈橘黄色，油球径0.34～0.38mm，其卵径及油球径的大小，通常天然受精卵要比人工受精卵略大。在水温11～16℃ (主要在12～13℃) 需经108h开始孵化，至120h(即5d) 孵化结束，花鲈的胚胎发育过程如图13-4-2。但发育速度与温度有密切关系。日本九州在14～18℃需4～4.5d孵化; 在水温18～21.2℃，盐度31‰～34‰的条件下，一般仅经50h左右即破膜孵化 (表13-4-2)。盐度对胚胎的发育也有明显的影响; 据郑镇安等 (1993) 实验，盐度低于25‰时，其孵化率明显的降低，而且孵化时间长，仔鱼形态及体质也受影响。因此花鲈受精卵发育需 要较高的盐度。
表13-4-2 花鲈胚胎发育过程
(郑镇安，1993)
| 受精后时间 (h：min) | 水温 (℃) | 发育阶 段 | 受精后时间 (h：min) | 水温 (℃) | 发育阶段 |
| 0 1：15 1：50 2：15 2：50 3：55 5：20 11：50 | 20.8 20.8 20.8 20.8 20.8 20.8 20.2 18.5 | 受精卵 2细胞 4细胞 8细胞 16细胞 64细胞 多细胞 囊胚期 | 16：30 18：20 21：10 23：00 25：40 35：40 40：55 50：40 | 18.0 19.0 19.6 20.2 20.2 18.0 18.3 21.0 | 原肠前期：胚环形成 原肠中期：1/2的卵黄内陷为囊胚层 原肠晚期：神经泡出现，卵黄内陷为原肠胚 胚胎形成 库氏泡及眼泡形成 开始有心跳现象 胚动期 开始脱膜孵化 |
仔、稚鱼的发育 初孵仔鱼全长3.53～4.28mm，头部紧贴在卵黄囊的前上方，油球位于卵黄囊前端;消化管(digestive canal)细而平直、较短; 胸鳍小、呈叶芽状，各奇鳍呈膜状，连在一起; 鱼体中部两侧有 树状黑色素斑。静止时仔鱼卵黄囊朝上平躺于水面，偶作间歇性窜动。仔、稚鱼各发育阶段的形态如图13- 4-2。
图13-4-2 花鲈卵和仔鱼的发生
1.受精卵 2.___细胞期 3.八细胞期 4.高囊胚期 5.原肠胚期 6.胚体雏形
7.胚体绕卵黄1/2 8.孵化前期 9.初孵仔鱼 10.孵后17h仔鱼 11.孵后34h仔鱼 12.体长 13. 70mm仔鱼
(万瑞景)
第1d： 仔鱼 (larva fish) 全长3.92～4.25mm，卵黄囊收缩2/5，油球略缩小，鱼体两侧黄色素明显，并布有树枝状或点状黑色素细胞 (melanophore)。肌节19+18=37。静止时，仔鱼头部朝下悬挂于水层中。第2d： 仔鱼全长4.42～4.72mm，卵黄囊缩小1/2～2/3，油球缩小1/3，仔鱼活力增强。第3～4d： 仔鱼全长4.57～4.92mm，口开启，眼出现黑色素 (melanine)，消化道变粗。第5～8d： 仔鱼全长4.81～5.14mm，卵黄囊仅剩残余，消化道开始盘旋，能蠕动。黑色素细胞从头部至尾部的背腹分布，但细胞数目减少。尾原基出现，仔鱼转为平游，开始摄食双壳类幼体 (bivalve larva) 和轮虫(rotifer)。第9～12d：仔鱼全长5.10～5.82mm，体表黄色素颗粒减少。其主动摄食能力增强。第13～15d： 仔鱼全长5.26～6.80mm，鳔泡形成，脊索平直，体侧黑色素丛出现，避强光。第16～17d： 仔鱼全长6.50～9.06mm，口裂增大，上下颌具细齿，鳃耙出现。黑色素集中鱼体背腹两侧，尾鳍条出现。鱼苗活泼，可摄食卤虫无节幼体 (brine shrimp nauplius)。第21～25d： 仔鱼全长8.70～11.70mm，脊索 (notochord) 末端向上弯曲，尾鳍条14～16枚，鳃盖(gill cover) 后缘具小齿。鱼苗强烈摄食卤虫无节幼体。第26～40d： 仔鱼全长9.20～15.50mm，头部增大已颇似幼鱼，除腹鳍条外，各鳍鳍条发达，第二背鳍条12、臀鳍条8，前鳃盖骨后缘出现5+8个小棘。从背鳍和臀鳍基部至尾基浓密排列着黑色素胞，同时沿体侧中线亦布有黑色素胞。鱼苗除摄食卤虫幼体外，还大量摄食桡足类 (copepod)。第41～60d： 稚、幼鱼全长13.20～28.00mm，腹鳍形成; 第1背鳍9枚棘，第2背鳍为4棘13软条; 臀鳍2棘9软条，并趋于定数。前鳃盖骨后缘小棘与鱼体相比开始缩小，全长25.00mm以上个体的体侧开始出现栉鳞并出现侧线，直至全身披鳞，变态完成，从稚鱼进入幼鱼期，鱼苗 能摄食糠虾肉糜和鱼肉糜。
上述是在适温条件培育的结果，所以早期发育的各阶段速度快，而在自然海区中，由于是在低温条件下，所以发育滞缓，直到第二年4月初出现在近岸时的体长还仍只有12～15mm。